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scanpy

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Analisar dados de RNA-seq de célula única

Auch verfügbar von: davila7

O sequenciamento de RNA de célula única gera conjuntos de dados complexos que requerem análise especializada. Esta habilidade fornece um fluxo de trabalho completo para controle de qualidade, redução de dimensionalidade, agrupamento e visualização de dados de expressão gênica de célula única.

Unterstützt: Claude Codex Code(CC)
🥈 79 Silber
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Teste es

Verwendung von "scanpy". Carregar meus dados de célula única e executar controle de qualidade

Erwartetes Ergebnis:

  • Carregado 3.245 células x 20.000 genes
  • Métricas de QC: média de 1.542 genes por célula, 4,2% de leituras mitocondriais
  • Após filtragem: 2.987 células x 15.432 genes (92% das células retidas)
  • Salvos plots violinos de QC em figures/qc_violin.pdf

Verwendung von "scanpy". Executar fluxo de trabalho completo de agrupamento e anotação

Erwartetes Ergebnis:

  • Identificados 12 clusters de células usando o algoritmo de Leiden
  • Gerada visualização UMAP colorida por cluster
  • Principais genes marcadores identificados para cada cluster
  • Tipos celulares anotados com base na expressão conhecida de marcadores

Sicherheitsaudit

Sicher
v4 • 1/17/2026

All 228 static findings are false positives. This is a legitimate scientific computing skill for single-cell RNA-seq analysis. The scanner incorrectly flagged: markdown inline code formatting (backticks), file I/O functions for data reading, directory creation operations, and git tree hashes as C2 indicators. No malicious patterns, network exfiltration, or command injection risks exist after human evaluation.

7
Gescannte Dateien
3,003
Analysierte Zeilen
3
befunde
4
Gesamtzahl Audits
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Qualitätsbewertung

82
Architektur
90
Wartbarkeit
85
Inhalt
21
Community
100
Sicherheit
91
Spezifikationskonformität

Was du bauen kannst

Análise exploratória de scRNA-seq

Analisar conjuntos de dados de expressão gênica de célula única para identificar tipos, estados e populações celulares.

Descoberta de genes marcadores

Identificar genes diferencialmente expressos entre clusters e caracterizar populações celulares.

Pipelines de visualização

Gerar plots de UMAP, t-SNE e outras reduções de dimensionalidade para publicações.

Probiere diese Prompts

Carregar e inspecionar dados
Carregar meus dados de célula única de data.h5ad e mostrar a estrutura básica, incluindo contagem de células e genes.
Controle de qualidade e filtragem
Executar controle de qualidade no meu conjunto de dados, filtrar células com menos de 200 genes ou mais de 5% de leituras mitocondriais, e gerar plots de QC.
Agrupar e anotar
Executar agrupamento na resolução 0.5, gerar visualização UMAP e identificar genes marcadores para cada cluster.
Análise completa
Executar um fluxo de trabalho completo do scanpy: QC, normalização, genes altamente variáveis, PCA, vizinhos, UMAP, agrupamento de Leiden na resolução 0.8, e salvar resultados.

Bewährte Verfahren

  • Sempre salvar contagens brutas antes da filtragem: adata.raw = adata
  • Validar o agrupamento verificando a expressão de genes marcadores conhecidos
  • Salvar resultados intermediários para evitar re-executar fluxos de trabalho longos

Vermeiden

  • Pular etapas de controle de qualidade antes da análise subsequente
  • Usar resolução de agrupamento padrão sem testar múltiplos valores
  • Não visualizar dados antes e depois das etapas de filtragem

Häufig gestellte Fragen

Quais formatos de arquivo o scanpy suporta?
Scanpy suporta arquivos h5ad, MTX da 10X Genomics, HDF5, CSV, loom e texto.
Quantos vizinhos devo usar para UMAP?
O padrão é 10-30 vizinhos. Valores mais baixos preservam a estrutura local; valores mais altos capturam padrões globais.
Agrupamento Leiden vs Louvain?
Leiden é recomendado, pois produz clusters de melhor qualidade e é mais eficiente que Louvain.
Quantos PCs devo usar?
Verificar o gráfico de razão de variância do PCA. Usar PCs antes do cotovelo, tipicamente 30-50 para conjuntos de dados com alta variabilidade.
Qual é o limite mitocondrial?
O limite típico é 5-20%. Limites mais baixos removem mais células; valide com marcadores de tipo celular conhecidos.
Como anotar tipos celulares?
Usar genes marcadores conhecidos para tipos celulares. Visualizar a expressão em UMAP e comparar genes marcadores de clusters com bancos de dados de referência.