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Analyser les données NGS avec deepTools

Auch verfügbar von: davila7

Traitez et visualisez les données de séquençage de nouvelle génération. Convertissez BAM en bigWig, générez des graphiques de contrôle qualité et créez des heatmaps prêtes pour publication pour les expériences ChIP-seq, RNA-seq et ATAC-seq.

Unterstützt: Claude Codex Code(CC)
🥈 79 Silber
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Teste es

Verwendung von "deeptools". Créer une heatmap du signal ChIP-seq autour des régions TSS

Erwartetes Ergebnis:

  • Étape 1 : Calculer la matrice autour du TSS
  • computeMatrix reference-point -S signal.bw -R genes.bed -b 3000 -a 3000 --referencePoint TSS -o matrix.gz
  •  
  • Étape 2 : Générer la heatmap
  • plotHeatmap -m matrix.gz -o heatmap.png --colorMap RdBu --kmeans 3
  •  
  • Paramètres expliqués :
  • -b 3000 : 3kb en amont du TSS
  • -a 3000 : 3kb en aval du TSS
  • --kmeans 3 : Regrouper les gènes en 3 groupes selon le motif du signal

Verwendung von "deeptools". Vérifier la qualité ChIP-seq avec le graphique d'empreinte

Erwartetes Ergebnis:

  • Exécutez plotFingerprint pour évaluer l'enrichissement :
  • plotFingerprint -b input.bam chip.bam -o fingerprint.png --extendReads 200 --ignoreDuplicates
  •  
  • Interprétation :
  • - Une montée raide indique un fort enrichissement du ChIP
  • - Une diagonale plate suggère un faible enrichissement
  • - Le contrôle doit montrer une distribution quasi-linéaire

Sicherheitsaudit

Sicher
v4 • 1/17/2026

All 519 static findings are FALSE_POSITIVES. The scanner misinterpreted markdown documentation examples with backticks as shell execution, 'SAM files' (Sequence Alignment/Map format) as Windows SAM database, and mentions of bioinformatics tools (samtools, plotFingerprint) as security threats. The Python scripts perform legitimate workflow generation for NGS analysis. No actual security risks present.

9
Gescannte Dateien
3,062
Analysierte Zeilen
3
befunde
4
Gesamtzahl Audits

Risikofaktoren

⚙️ Externe Befehle (2)
📁 Dateisystemzugriff (1)
🌐 Netzwerkzugriff (1)
Auditiert von: claude Audit-Verlauf anzeigen →

Qualitätsbewertung

82
Architektur
100
Wartbarkeit
87
Inhalt
22
Community
100
Sicherheit
78
Spezifikationskonformität

Was du bauen kannst

Contrôle qualité pour les expériences ChIP-seq

Validez la qualité du ChIP, évaluez la force d'enrichissement et comparez les réplicats avant l'analyse en aval.

Génération de pistes de couverture

Créez des fichiers bigWig normalisés à partir des alignements BAM pour la visualisation dans le navigateur du génome.

Comparaison d'échantillons

Comparez plusieurs échantillons avec une analyse de corrélation et générez des heatmaps prêtes pour la publication.

Probiere diese Prompts

Conversion basique
Convertissez mon fichier sample.bam en piste de couverture bigWig normalisée utilisant la normalisation RPGC pour le génome hg38.
Vérification qualité
Vérifiez la qualité de mon expérience ChIP-seq en générant un graphique d'empreinte et une heatmap de corrélation.
Visualisation
Générez une heatmap montrant le signal ChIP autour des sites d'initiation de transcription pour mes données H3K4me3.
Workflow complet
Générez un workflow complet d'analyse ChIP-seq des fichiers BAM aux heatmaps comparant le traitement versus le contrôle d'entrée.

Bewährte Verfahren

  • Validez toujours les fichiers BAM avec le script de validation avant l'analyse pour vous assurer que les indices existent
  • Choisissez la méthode de normalisation appropriée : RPGC pour ChIP-seq, CPM pour les bins RNA-seq, RPKM pour l'analyse au niveau des gènes
  • Utilisez --ignoreDuplicates pour supprimer les duplicatas PCR sauf si vous analysez spécifiquement la clonalité

Vermeiden

  • N'utilisez pas --extendReads pour l'analyse RNA-seq car cela s'étendrait au-delà des jonctions d'épissage
  • Évitez de mélanger les méthodes de normalisation lors de la comparaison de plusieurs échantillons
  • Ne sautez pas les étapes de contrôle qualité avant l'analyse détaillée

Häufig gestellte Fragen

Quelle méthode de normalisation dois-je utiliser pour le ChIP-seq ?
Utilisez RPGC pour les pistes de couverture ChIP-seq ou CPM pour une normalisation simple. Les deux nécessitent la taille effective du génome.
Pourquoi mon fichier BAM donne-t-il une erreur ?
Assurez-vous que le fichier BAM a un fichier d'index .bai correspondant. Exécutez : samtools index votrefichier.bam
Puis-je utiliser ceci pour les données ATAC-seq ?
Oui. Utilisez alignmentSieve avec --ATACshift pour appliquer la correction Tn5 avant la génération de couverture.
Quelle taille de génome dois-je utiliser ?
Humain hg38 : 2913022398, Souris mm10 : 2652783500, Drosophile dm6 : 142573017. Utilisez la taille effective du génome, pas la taille de l'assemblage.
Comment comparer le traitement versus le contrôle ?
Utilisez bamCompare avec --operation log2 pour créer une piste de rapport log2 du ChIP sur l'entrée.
Pourquoi mes heatmaps sont-elles vides ?
Vérifiez que vos fichiers bigWig et BED utilisent des assemblages de génome et des chromosomes correspondants.